Субпопуляции лимфоцитов методом проточной цитометрии

Субпопуляции лимфоцитов методом проточной цитометрии thumbnail

[20-077]
Фенотипирование лимфоцитов (основные субпопуляции) – CD3, CD4, CD8, CD19, CD56

4035 руб.

Исследование включает в себя определение абсолютных и относительных значений субпопуляционного состава лимфоцитов (CD3, CD4, CD8, CD19, CD56). Рекомендуется к назначению для контроля показателей клеточного звена иммунной системы в динамике после комплексного иммунологического обследования.

Синонимы русские

Иммунофенотипирование, клеточный иммунитет, многоцветный клеточный анализ методом проточной цитометрии, субпопуляции лимфоцитов.

Синонимы английские

Human Immune System, Immunophenotyping, Multicolor Flow Cytometry Cell Analysis, Human Leukocyte Differentiation Antigens.

Метод исследования

Проточная цитометрия.

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Венозную кровь.

Как правильно подготовиться к исследованию?

  • Исключить из рациона алкоголь в течение 24 часов до исследования.
  • Детям в возрасте до 1 года не принимать пищу в течение 30-40 минут до исследования.
  • Детям в возрасте от 1 до 5 лет не принимать пищу в течение 2-3 часов до исследования.
  • Не принимать пищу в течение 12 часов до исследования, можно пить чистую негазированную воду.
  • Полностью исключить (по согласованию с врачом) прием лекарственных препаратов в течение 24 часов перед исследованием.
  • Исключить физическое и эмоциональное перенапряжение в течение 24 часов до исследования.
  • Не курить в течение 30 минут до исследования.

Общая информация об исследовании

Оценка клеточного состава (иммунофенотипирование) лимфоцитов крови человека – основной компонент в оценке иммунного статуса – выполняется методом проточной цитофлуориметрии.

Иммунофенотипирование – характеристика клеток при помощи моноклональных антител или каких-либо других зондов, позволяющих судить об их типе и функциональном состоянии по наличию того или иного набора клеточных маркеров.

Иммунофенотипирование лейкоцитов заключается в обнаружении на их поверхности маркеров дифференциации, или CD антигенов. Лейкоциты экспрессируют ряд поверхностных и цитоплазматических антигенов, уникальных для своей субпопуляции и стадии развития. CD антигены (англ. cluster of differentiation antigens) – это антигены на поверхности клеток, маркеры, отличающие одни типы клеток от других. Дифференциации этих антигенов изучены и стандартизованы, им присвоены определенные номера. CD могут быть распознаны с помощью соответствующих моноклональных антител. Используя флюоресцентно-меченые моноклональные антитела, связывающиеся с определенными CD, можно с помощью метода проточной цитометрии произвести подсчёт содержания лимфоцитов, относящихся к различным по функции или стадии развития субпопуляциям.

В основе проточной цитофлуориметрии лежит проведение фотометрических и флюоресцентных измерений отдельных клеток, пересекающих одна за другой вместе с потоком жидкости луч монохроматического света, обычно света лазера.

Метод позволяет не только определить количественное соотношение основных популяций лимфоцитов:

  • Т-лимфоциты (CD3+CD19-);
  • Т-хелперы/индукторы (CD3+CD4+CD45+);
  • Т-цитотоксические лимфоциты (Т-ЦТЛ) (CD3+CD8+CD45+);
  • истинные “натуральные киллеры” (NK-клетки) (CD3-CD56+CD45+);
  • В-лимфоциты (CD19+CD3-);

– но и оценить малые клеточные популяции, а также изучить их функциональную активность:

  • Т-лимфоциты, экспрессирующие маркеры NK-клеток(Т-NK-клетки) (CD3+CD56+CD45+);
  • NK-клетки, экспрессирующие α-цепь антигена CD8 (CD3-СD8+CD45+).

Когда назначается исследование?

Рекомендовано для комплексного обследования пациентов, входящих в группу риска по четырем основным иммунопатологическим синдромам.

С инфекционным синдромом:

  • частые ОРВИ, хронические инфекции ЛОР-органов (гнойные синуситы, отиты, периодически встречающиеся лимфадениты, пневмонии с тенденцией к рецидивированию, бронхоплевропневмонии);
  • бактериальные инфекции кожи и подкожной клетчатки (пиодермии, фурункулез, абсцессы, флегмоны, септические гранулемы, рецидивирующий парапроктит у взрослых);
  • урогенитальные инфекции;
  • грибковые поражения кожи и слизистых оболочек, кандидоз, паразитарные инвазии;
  • рецидивирующий герпес различной локализации;
  • гастроэнтеропатия с хронической диареей неясной этиологии, дисбактериозом;
  • длительный субфебрилитет, лихорадка неясной этиологии;
  • генерализованные инфекции: сепсис, гнойные менингиты.

С аллергическим (атопическим) синдромом:

  • атопический дерматит;
  • нейродермит;
  • экзема с инфекционным компонентом;
  • тяжелая атопическая бронхиальная астма, поллиноз, хронический астматический бронхит.

С аутоиммунным синдромом:

  • ревматоидный артрит;
  • рассеянный склероз;
  • диффузные заболевания соединительной ткани (системная красная волчанка, склеродермия, дерматомиозит);
  • аутоиммунный тиреоидит;
  • неспецифический язвенный колит.

С иммунопролиферативным синдромом:

  • опухолевые процессы в иммунной системе (лимфомы, болезнь Ходжкина, острый и хронический лимфолейкоз, саркома Капоши).

Что означают результаты?

Изменения различных клеточных популяций лимфоцитов в сторону повышения или понижения развиваются при различных патологических процессах в организме, таких как инфекции, аутоиммунные и онкологические заболевания, иммунодефициты, в постоперационном периоде, при трансплантации органов.

Ниже представлена таблица с клиническими ситуациями, которые могут приводить к изменениям в субпопуляционном составе лимфоцитов.

Субпопуляция лимфоцитов

Повышение показателя

Снижение показателя

T-лимфоциты

(CD3+CD19-)

  • Острые и хронические инфекции;
  • гормональный дисбаланс;
  • длительный прием лекарственных препаратов (особенно монотерапия);
  • прием биологически активных добавок;
  • интенсивные занятия спортом;
  • беременность;
  • Т-клеточные лейкозы.
  • Некоторые виды инфекций;
  • иммунодефицитные состояния;
  • алкогольный цирроз печени;
  • карцинома печени;
  • аутоиммунные заболевания;
  • прием иммуносупрессивных препаратов.

Т-хелперы

(CD3+CD4+CD45+)

  • Ряд аутоиммунных заболеваний;
  • гормональный дисбаланс;
  • некоторые инфекции;
  • отдельные Т-клеточные лейкозы;
  • отравление солями бериллия.
  • Иммунодефицитные состояния (основной лабораторный признак вторичного иммунодефицита);
  • алкогольная болезнь печени;
  • аутоиммунные заболевания;
  • прием иммуносупрессивных    препаратов или стероидов.

Т-цитотоксические лимфоциты (CD3+CD8+CD45+)

  • Некоторые вирусные инфекции;
  • ряд Т-клеточных лейкозов;
  • наркоз;
  • острая фаза аллергии;
  • ряд аутоиммунных патологий.
 

  • Некоторые виды аутоиммунных, аллергических заболеваний;
  • иммуносупрессивная терапия.

В-лимфоциты

(CD19+CD3-)

  • Ряд аутоиммунных патологий;
  • стресс;
  • В-клеточные лимфомы;
  • длительная экспозиция формальдегидом.
  • Гипореактивность, перераспределение в очаги воспаления;
  • общий вариабельный иммунодефицит;
  • наследственный иммунодефицит;
  • внутривенное введение иммуноглобулинов;
  • алкогольный цирроз печени.

“Натуральные киллеры”

(CD3-CD56+CD45+), (CD3-CD16+CD45+)

  • Фаза восстановления после вирусных инфекций (гепатит В, С);
  • ряд аутоиммунных заболеваний;
  • онкологические заболевания;
  • беременность;
  • алкогольный цирроз печени.
  • Ряд инфекций;
  • ряд аутоиммунных заболеваний;
  • интенсивное курение;
  • иммуносупрессивная терапия и терапия стероидами.

Т-“натуральные киллеры”, НК-Т

(CD3+CD56+CD45+)

  • Длительные хронические воспалитель­ные процессы;
  • тяжелое течение воспалительных процессов;
  • длительная персистенция антигена в организме.

Не имеет диагнос­тического значения.

В совокупности с клиническими данными, симптоматикой, другими методами лабораторных исследований вышеуказанные изменения являются диагностическим признаком возникновения этих патологических процессов в организме человека.



Важные замечания

  • Результаты данного исследования необходимо сопоставлять с клиническими данными и показателями других лабораторных анализов.
  • Следует отметить, что оценка показателей в динамике существенно повышает клиническую значимость исследования.

Литература

  1. Хаитов, Р.М. Аллергология и иммунология : национальное руководство / под ред. Р.М. Хаитова, Н.И. Ильиной. – М. : ГЭОТАР-Медиа, 2009. – 656 с.
  2. Хаитов, Р.М. Руководство по клинической иммунологии. Диагностика заболеваний иммунной системы : руководство для врачей / Р.М. Хаитов, Б.В. Пинегин, А.А. Ярилин. – М. : ГЭОТАР-Медиа, 2009. – 352 с.
  3. Зуева Е.Е. Иммунная система, иммунограмма : рекомендации по назначению и применению в лечебно диагностическом процессе /Е.Е Зуева, Е.Б. Русанова, А.В. Куртова, А.П. Рыжак, М.В. горчакова, О.В. Галкина – СПб. – Тверь: ООО «издательство «Триада», 2008. – 60 с.
  4. Кетлинский, С.А. Иммунология для врача / С.А. Кетлинский, Н.М. Калинина. СПб. : Гиппократ, 1998. – 156 с. Ярилин, А.А. Иммунология : учебник / А.А. Ярилин. – М. : ГЭОТАР-Медиа, 2010. – 752 с.
  5. Хаитов, Р.М. Иммунология : атлас / Р.М. Хаитов, А.А. Ярилин, Б.В. Пинегин.М. : ГЭОТАР-Медиа, 2011. – 624 с.
  6. Хаитов, Р.М. Иммунология : учебник / Р.М. Хаитов. – М. : ГЭОТАР-Медиа, 2009. – 320 с.
  7. Хаитов, Р.М. Оценка иммунного статуса человека в норме и при патологии / Р.М. Хаитов, Б.В. Пинегин // Иммунология. – 2001. – N4. – С. 4–6.
  8. Whiteside, T.L. Role of Human Natural Killer Cells in Health and disease / T.L. Whiteside, R.B. Herberman // Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. – 1994. – Vol. 1, №2. – P. 125–133.
  9. Ginadi, L. Differential expression of T-cell antigens in normal peripheral blood lymphocytes : a quantitative analysis by flow cytometry / L. Ginadi, N. Farahat, E. Matutes [et al.] // J. Clin. Pathol. – 1996. – Vol. 49, № 1. – P. 539–544.
  10. Merser, J.C. Natural killer T-cells : rapid responders controlling immunity and disease / J.C. Merser, M.J. Ragin, A. August // International J. Biochemistry & Cell Biology. – 2005. – № 37. – P. 1337–1343.
  11. Никитин, В.Ю. Маркеры активации на Т-хелперах и цитотокси ческих лимфоцитахна различных стадиях хронического вирусного гепатита С / В.Ю. Никитин, И.А. Сухина, В.Н. Цыган [и др.] // Вестн. Рос. Воен.-мед. акад. – 2007. – Т. 17, № 1. – С. 65–71.
  12. Boettler, T. T cells with CD4+CD25+ regulatory phenotype suppress in vitro proliferation of virus-specific CD8+ T cells during chronic hepatitis C virus infection / T. Boettler, H.C. Spangenberg, C. Neumann-Haefelin [et al.] // J. Virology. − 2005. − Vol. 79, N 12. −P. 7860–7867.
  13. Ormandy, L.A. Increased Populations of Regulatory T Cells in Peripheral Blood of Patients with Hepatocellular Carcinoma / L.A. Ormandy, T. Hillemann, H. Wedemeyer [et al.] // J. Cancer Res. − 2005. − Vol. 65, N 6. − P. 2457–2464.
  14. Sakaguchi, S. Naturally arising FoxP3-expressing CD4+CD25+ regulatory T cells in immunological tolerance to self- and non-self / S. Sakaguchi // Nature Immunol. − 2005. −Vol. 6, N 4. − P. 345–352.
  15. Romagnani, S. Regulation of the T cell response / S. Romagnani // Clin. Exp. Allergy. – 2006. − Vol. 36. − P. 1357–1366.
  16. Хайдуков С.В., Основные и малые популяции лимфоцитов периферической крови человека  и их нормативные значения  (метод многоцветного цитометрического анализа) /Хайдуков С.В., Зурочка А.В., Тотолян А.А., Черешнев В.А.  // Мед. иммунология. – 2009. -Т. 11 (2-3). – С. 227-238.
Читайте также:  Иммунорегуляторный индекс субпопуляция лимфоцитов

Источник

Cтоимость анализов указана без учета взятия биоматериала

Метод определения
Субпопуляции лимфоцитов – иммунофенотипирование (проточная цитометрия).

Исследуемый материал
Цельная кровь (с ЭДТА)

Оценка состояния различных звеньев иммунитета, используемая в диагностике первичных и вторичных иммунодефицитов, аутоиммунных, лимфопролиферативных, инфекционных, гематологических заболеваний. 

В состав профиля входят следующие показатели:

  • Базофилы 
  • B-лимфоциты (CD3-19+), %
  • B-лимфоциты (CD3-19+)
  • T-лимфоц. (CD3+25+), % 
  • T-лимфоц. (CD3+25+) 
  • T-лимф. (CD3+19-), %
  • T-лимф. (CD3+19-) 
  • T- хелперы (CD3+4+), %
  • CD4/CD8 (иммунорег.индекс)
  • T-хелперы (CD3+4+)
  • T- цитотокс. (CD3+8+), %
  • T-цитотокс. (CD3+8+)
  • Эозинофилы
  • Т-лимф.(CD3+HLA DR+), %
  • Т-лимф.(CD3+HLA DR+)
  • Лимфоциты, %
  • Лимфоциты
  • Моноциты, %
  • Моноциты
  • Нейтрофилы (общ.число)
  • NK-лимф.(CD3-16+56+), %
  • NK-лимф.(CD16+56+11b+), %
  • NK-лимф.(CD16+56+11b+)
  • NK-лимф.(CD3-16+56+)
  • T-NK-лимф.(CD3+16+56+), %
  • T-NK-лимф.(CD3+16+56+)
  • Лейкоциты 

Основные субпопуляции лимфоцитов:

Т-лимфоциты – лимфоциты, созревание которых происходит в тимусе (отсюда их название). Они контролируют работу В-лимфоцитов, ответственных за образование антител, т. е. за гуморальный иммунный ответ. Т-хелперы, Th (от англ. to help – помогать) – разновидность Т-лимфоцитов, несут на своей поверхности структуры, способствующие распознаванию антигенов, презентированных вспомогательными клетками, участвуют в регуляции иммунного ответа, вырабатывая различные цитокины. Цитотоксические Т-клетки – распознают фрагменты антигена, на поверхности клеток-мишеней, ориентируют свои гранулы по направлению к мишени и высвобождают их содержимое в области контакта с ней. При этом некоторые цитокины являются сигналом гибели (по типу апоптоза) для клеток-мишеней. 

В-лимфоциты (от лат. «bursa» – сумка по названию сумки Фабрициуса, в которой созревают эти лимфоциты у птиц) проходят развитие в лимфоузлах и других периферических органах лимфоидной системы. На поверхности эти клетки несут иммуноглобулины, функционирующие как рецепторы к антигенам. В ответ на взаимодействие с антигеном В-лимфоциты отвечают делением и дифференциацией в плазматические клетки, вырабатывающие антитела, посредством которых обеспечивается гуморальный иммунитет. 

ЕК-клетки (естественные клетки-киллеры) или натуральные киллеры-клетки с естественной, неиммунной цитотоксической активностью к неопластически изменённым клеткам-мишеням, которые не относятся ни к зрелым Т- или В-лимфоцитам, ни к моноцитам. Т-ЕК-клетки (ЕКТ) – клетки с естественной неиммунной киллерной активностью, имеющие признаки Т-лимфоцитов. 

Активированные лимфоциты.

HLA-DR – один из антигенов MHC класса II (major histocompatibility complex – главный комплекс гистосовместимости), участвующих в презентации потенциально чужеродных антигенов, что необходимо для формирования адекватного иммунного ответа. При иммунофенотипировании может быть использован в качестве маркёра активированных клеток. CD3+HLA-DR+ – клетки, представляющие собой зрелые активированные Т-лимфоциты человека. CD3-HLA-DR+ – активированные клетки, не относящиеся к Т-лимфоцитам (В-лимфоциты и активированные ЕК). 

Способность лимфоцитов к активации.

Способность лимфоцитов к активации в данном тесте оценивают по содержанию лимфоцитов, экспрессирующих CD69 в ответ на инкубацию в присутствии ФГА (митоген растительного происхождения). CD69 (другие названия – activation inducer molecule, AIM; early activation antigen, EA-1) – ранний маркёр активации, трансмембранный белок типа I. Этот белок вовлечен в ранние механизмы активации Т-клеток, ЕК-клеток, В-клеток, моноцитов и тромбоцитов.

Фагоцитарная активность лейкоцитов.

Данные по фагоцитарной активности нейтрофилов и моноцитов (относительное содержание клеток, фагоцитировавших добавленные к пробе при инкубации меченые флюоресцентной меткой бактерии) позволяют оценить резервные возможности этих клеток по поглощению и перевариванию чужеродных агентов.

Циркулирующие иммунные комплексы общие (ЦИК)

Одновременное присутствие высоких концентраций антигенов и их специфических антител может вести к образованию циркулирующих иммунных комплексов. Иммунные комплексы могут выходить из кровотока в мелких сосудах и откладываться в тканях, например, в гломерулах почек, в лёгких, коже, суставах, стенке сосудов. ЦИК обладают способностью связывать и активировать комплемент, что ведёт к повреждению ткани. Повышение уровня ЦИК может наблюдаться при аутоиммунных заболеваниях, хронических инфекционных заболеваниях, при которых постоянная продукция антигена инфекционным агентом сочетается с иммунным ответом на него (хронические гепатиты). Клинически это часто проявляется гломерулонефритами, артритами, нейропатиями. Несмотря на непосредственную роль в патогенезе некоторых заболеваний, определение ЦИК не всегда информативно, поскольку количество иммунных комплексов, отложившихся в тканях более важно, чем количество комплексов, циркулирующих в крови. Исследование ЦИК может быть недостаточно чувствительным и специфичным в диагностике болезней, вызываемых иммунными комплексами, и должно дополняться исследованием эффектов ЦИК на функцию органов (например, концентрация креатинина и анализ мочи), а также определением С3 С4 компонентов комплемента (см. тест № 193), количество которых снижается вследствие усиленного потребления. 

Читайте также:  Лимфоциты у грудничка норма в месяц

Иммуноглобулины. См. информацию.к тестам Иммуноглобулины IgG, IgA, IgM, – №№ 45, 46, 47. 

Данные иммунологического исследования интерпретирует врач-иммунолог в комплексе со всеми клинико-анамнестическими данными конкретного пациента. При оценке иммунного статуса пациента результаты исследования оценивают с точки зрения природы и стадии патологического процесса, сопутствующих заболеваний, приёма лекарственных препаратов и пр. При этом важны не только абсолютные значения отдельных показателей, но и их соотношение и динамика показателей. Изменения иммунологических показателей могут быть проявлением нормальной реакции организма на воздействие физиологических или патологических факторов (с различной картиной сдвигов на разных стадиях заболевания), отражать чрезмерную активацию, истощение иммунной системы, характеризовать врождённый или приобретённый дефект отдельных звеньев иммунной системы.

Литература

  1. Зурочка А.В., Хайдуков С.В. и др. – Проточная цитометрия в медицине и биологии. – Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2013. – 552 с. 
  2. Клиническая иммунология и аллергология / Ред. Лолор-младший Г., Фишер Т, Д. Адельман Д../: Пер. с англ. – М.: Практика, 2000. – 806 с.
  3. Клиническая лабораторная диагностика. Национальное руководство. Том 2./Ред. Долгов В.В., Меньшиков В.В./ – М., ГЭОТАР-Медиа, 2012 – 808 с. 
  4. Практическое руководство по детским болезням. Том 8 Иммунология детского возраста. /Ред. А.Ю.Щербина, Е.Д.Пашанов/ – Москва: МЕДПРАКТИКА, 2006 – 432 с. 
  5. Ройт А., Бростофф Д., Дейл Д. Иммунология. – М.: Мир, 2000 — 592 с 
  6. Ярилин А. А. Иммунология. – М.: ГЭОТАР-Медиа. 2010 – 752 с. 
  7. Leach М., Drummond М., Doig A. Practical Flow Cytometry in Haematology Diagnosis Hardcover. – WILEY-BLACKWELL, 2013. 
  8. Tietz Clinical guide to laboratory tests. 4-th ed. Ed. Wu A.N.B. – USA: W.B Sounders Company, 2006 – 1798 p.

Строго натощак (в период с 7.00 до 11.00) после ночного периода голодания от 8 до 14 часов. 

Накануне исследования необходимо исключить повышенные психоэмоциональные и физические нагрузки (спортивные тренировки), приём алкоголя, за час до исследования – курение.

  • Рецидивирующие инфекции, инфекционные заболевания с хроническим и затяжным течением.
  • Подозрение на генетически обусловленный или приобретённый иммунодефицит.
  • Аутоиммунные заболевания.
  • Аллергические заболевания.
  • Подозрение на синдром приобретённого иммунодефицита (СПИД).
  • Онкологические заболевания.
  • Обследование реципиентов до и после трансплантации органов.
  • Обследование пациентов перед серьёзными оперативными вмешательствами.
  • Осложнённое течение послеоперационного периода. 
  • Контроль терапии цитостатиками, иммунодепрессантами и иммуномодуляторами.

Интерпретация результатов

Интерпретация результатов исследований содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т.д.

Данные иммунологического исследования интерпретирует врач в комплексе со всеми клинико-анамнестическими данными конкретного пациента. При оценке иммунного статуса пациента результаты исследования оценивают с точки зрения природы и стадии патологического процесса, сопутствующих заболеваний, приёма лекарственных препаратов и пр. При этом важны не только абсолютные значения отдельных показателей, но и их соотношение и динамика показателей.

Название тестаПол Возраст

Референсные

значения

Единицы

измерения

БазофилыМужской и Женский1 день – 120 лет0,0 – 1,0%
В-лимфоциты (CD3-19+),%Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев11 – 45%
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет21 – 28
Мужской и Женский6 лет – 17 лет21 – 28
Мужской и Женский17 лет – 120 лет7 – 17
В-лимфоциты (CD3-19+)Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев387 – 2137кл/мкл
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет740 – 1330
Мужской и Женский6 лет – 17 лет700 – 1300
Мужской и Женский17 лет – 120 лет7 – 17
Т-лимфоц. (CD3+25+), %Мужской и Женский2 дня – 12 меясцев7 – 18%
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет7 – 18
Мужской и Женский6 лет – 17 лет7 – 18
Мужской и Женский17 лет – 120 лет7 – 18
Т-лимфоц. (CD3+25+)Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев60 – 400кл/мкл
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет60 – 400
Мужской и Женский6 лет – 17 лет60 – 400
Мужской и Женский17 лет – 120 лет60 – 400
Т-лимф. (CD3+19-), %Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев55 – 82%
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет62 – 69
Мужской и Женский6 лет – 17 лет66 – 76
Мужской и Женский17 лет – 120 лет61 – 85
Т-лимф. (CD3+19-)Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев1614 – 3577кл/мкл
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет1820 – 3010
Мужской и Женский6 лет – 17 лет1400 – 2000
Мужской и Женский17 лет – 120 лет946 – 2079
Т-хелперы (CD3+4+),%Мужской и Женский17 лет – 120 лет35 – 55%
CD4/CD8 (иммунорег. индекс)Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев1,8 – 2,2у.е.
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет1,0 – 2,0
Мужской и Женский6 лет – 17 лет1,0 – 2,0
Мужской и Женский17 лет – 120 лет1,8 – 2,2
Т-хелперы (CD3+4+)Мужской и Женский17 лет – 120 лет576 – 1336кл/мкл
Т-цитокс. (CD3+8+),%Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев8 – 31%
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет25 – 32
Мужской и Женский6 лет – 17 лет27 – 35
Мужской и Женский17 лет – 120 лет19 – 35
Т-цитокс. (CD3+8+)Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев259 – 1470кл/мкл
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет810 – 1520
Мужской и Женский6 лет – 17 лет600 – 900
Мужской и Женский17 лет – 120 лет372 – 974
ЭозинофилыМужской и Женский1 день – 15 дней1,0 – 6,0%
Мужской и Женский15 дней – 12 месяцев1,0 – 5,0
Мужской и Женский12 месяцев – 2 года1,0 – 7,0
Т-лимф. (CD3+HLA DR+), %Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев1 – 6%
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет1 – 6
Мужской и Женский6 лет – 17 лет1 – 6
Мужской и Женский17 лет – 120 лет1 – 6
Т-лимф. (CD3+HLA DR+)Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев7 – 163кл/мкл
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет7 – 163
Мужской и Женский6 лет – 17 лет7 – 163
Мужской и Женский17 лет – 120 лет7 – 163
Лимфоциты, %Мужской и Женский1 день – 15 дней22,0 – 55,0%
Мужской и Женский15 дней – 12 месяцев45,0 – 70,0
Мужской и Женский12 месяцев – 2 года37,0 – 60,0
Мужской и Женский2 года – 5 лет33,0 – 55,0
Мужской и Женский5 лет – 9 лет30,0 – 50,0
Мужской и Женский9 лет – 12 лет30,0 – 46,0
Мужской и Женский12 лет – 15 лет30,0 – 45,0
Мужской и Женский15 лет – 120 лет19,0 – 37,0
ЛимфоцитыМужской и Женский1 день – 2 дня1,60 – 7,4010^9/л
Мужской и Женский2 дня – 5 дней1,60 – 6,0
Мужской и Женский5 дней – 28 дней2,80 – 9,00
Мужской и Женский28 дней – 6 месяцев4,00 – 13,50
Мужской и Женский6 месяцев – 12 месяцев4,00 – 10,50
Мужской и Женский12 месяцев – 2 года3,00 – 9,50
Мужской и Женский2 года – 4 года2,00 – 8,00
Мужской и Женский4 года – 6 лет1,50 – 7,00
Мужской и Женский6 лет – 10 лет1,50 – 6,50
Мужской и Женский10 лет – 21 год1,00 – 4,80
Женский21 год – 120 лет1,18 – 3,74
Мужской21 год – 120 лет1,32 – 3,57
Моноциты, %Мужской и Женский1 день – 15 дней5,0 – 15,0%
Мужской и Женский15 дней- 12 месяцев4,0 – 10,0
Мужской и Женский12 месяцев – 2 года3,0 – 10,0
Мужской и Женский2 года – 15 лет3,0 – 9,0
Мужской и Женский15 лет – 120 лет3,0 – 11,0
МоноцитыМужской и Женский1 день – 2 дня0,00 – 2,0010^9/л
Мужской и Женский2 дня – 28 дней0,00 – 1,70
Мужской и Женский28 дней – 6 месяцев0,00 – 1,17
Мужской и Женский6 месяцев – 12 месяцев0,00 – 1,15
Мужской и Женский12 месяцев – 2 года0,00 – 1,00
Мужской и Женский2 года – 21 год0,00 – 0,80
Мужской и Женский21 год – 120 лет0,20 – 0,95
Нейтрофилы (общ.число)Мужской и Женский0 дней – 15 дней31,0 – 56,0%
Мужской и Женский15 дней – 12 месяцев17,0 – 51,0
Мужской и Женский12 месяцев – 2 года29,0 – 54,0
Мужской и Женский2 года – 5 лет33,0 – 61,0
Мужской и Женский5 лет – 7 лет39,0 – 64,0
Мужской и Женский7 лет – 9 лет42,0 – 66,0
Мужской и Женский9 лет – 11 лет44,0 – 66,0
Мужской и Женский11 лет – 15 лет46,0 – 66,0
Мужской и Женский15 лет – 120 лет48,0 – 78,0
NK-лимф. (CD3-16+56+), %Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев9 – 21%
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет8 – 15
Мужской и Женский6 лет – 17 лет8 – 15
Мужской и Женский17 лет – 120 лет9 – 21
NK-лимф. (CD3-16+56+)Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев123 – 369кл/мкл
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет210 – 640
Мужской и Женский6 лет – 17 лет200 – 600
Мужской и Женский17 лет – 120 лет123 – 369
T-NK-лимф. (CD3+16+56+), %Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев1 – 6%
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет1 – 6
Мужской и Женский6 лет – 17 лет1 – 6
Мужской и Женский17 лет – 120 лет1 – 6
T-NK-лимф. (CD3+16+56+)Мужской и Женский2 дня – 12 месяцев7-165кл/мкл
Мужской и Женский12 месяцев – 6 лет7-165
Мужской и Женский6 лет – 17 лет7-165
Мужской и Женский17 лет – 120 лет7-165
ЛейкоцитыМужской и Женский1 день – 12 месяцев6,00 – 17,5010^9/л
Мужской и Женский12 месяцев – 2 года6,00 – 17,00
Мужской и Женский2 года – 4 года5,50 – 15,50
Мужской и Женский4 года – 6 лет5,00 – 14,50
Мужской и Женский6 лет – 10 лет4,50 – 13,50
Мужской и Женский10 лет – 16 лет4,50 – 13,00
Мужской и Женский16 лет – 120 лет4,50 – 11,0
Читайте также:  Атипичный лимфоцит при беременности

Артикул:
31414Ф

Срок исполнения:

до 3 рабочих дней ?

Указанный срок не включает день взятия биоматериала

Цена:
4 300 руб

Взятие крови из вены:

  • + 165 руб

В этом разделе вы можете узнать, сколько стоит выполнение данного исследования в вашем городе, ознакомиться с описанием теста и таблицей интерпретации результатов. Выбирая, где сдать анализ «Определение различных популяций лимфоцитов, основные+определение маркеров активации (CD-типирование методом проточной цитометрии)» в Каслях и других городах России, не забывайте, что цена анализа, стоимость процедуры взятия биоматериала, методы и сроки выполнения исследований в региональных медицинских офисах могут отличаться.

Источник